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武汉爱基百客生物科技有限公司(简称爱基百客),位于武汉高农生物园,办公面积逾3000平方米,是一家专业提供单细胞与空间组学测序分析、表观组学科研服务和高通量测序分析的新型生物科技服务企业。

公司旨在为客户提供最专业的科研服务,运营至今合作的科研客户近千家,涵盖国内知名科研院所、高校以及相关生物企业,运营至今销售额超1亿元,科研成果曾多次在Science、Cancer Cell、Plant Cell、Nature Communications、J HEMATOL ONCOL等国际高水平学术期刊发表,受到了客户广泛好评,是国内成长最迅速的高通量测序科研服务企业之一。

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如何进行Motif预测分析和解读?MEME和HOMER全解析

Motif预测分析是一种在生物信息学和计算生物学中广泛应用的技术,用于识别DNA、RNA或蛋白质序列中具有生物学功能的短保守序列模式。接下来让我们一起了解其分析的目的、在不同富集类实验中的区别与常用分析软件。



Motif预测分析的目的

解析基因调控机制:在DNA序列中,转录因子等调控蛋白通过结合特定的motif来启动或抑制基因转录。如通过motif预测分析找到与细胞周期调控相关基因的启动子区域的motif,可揭示细胞周期的调控机制。

推断生物功能:蛋白质序列中的motif往往与特定功能相关,如酶的活性中心、信号传导蛋白的结合位点等。通过motif预测分析可推断新发现蛋白质的功能。

研究分子进化:保守的motif在不同物种中可能具有相似功能。对比不同物种间的motif,可以了解基因家族的进化关系和功能演变。



Motif预测分析在ChIP-seq和RIP-seq中的差异

  • 2.1 技术原理差异

ChIP-seq先通过甲醛交联将细胞内的蛋白质与DNA连接,用超声波将基因组DNA打断,再用特异性抗体进行免疫沉淀,得到与目标蛋白结合的DNA片段,测序后进行motif分析;RIP-seq实验使用蛋白的特异性抗体将RNA-蛋白质复合体沉淀,回收RNA片段,测序后进行motif分析。

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图 1 ChIP-seq实验步骤

RIP-seq 实验流程图.png

图 2 RIP-seq实验步骤

  • 2.2 研究对象差异

ChIP-seq研究蛋白质与DNA的相互作用,其motif预测分析主要是寻找转录因子等蛋白质在DNA上的结合位点motif;RIP-seq研究RNA结合蛋白与RNA的相互作用,其motif预测分析是寻找RNA结合蛋白在RNA上的结合位点motif。

  • 2.3 分析意义的区别

ChIP-seq的motif预测分析可用于研究基因转录调控、染色质状态和基因组结构等,帮助构建基因调控网络;RIP-seq的motif预测分析主要用于研究RNA加工、转运、翻译调控和RNA稳定性等,有助于了解RNA结合蛋白在基因表达后调控中的作用。

当然,除了ChIP-seq和RIP-seq,motif预测分析还可用于确定基因家族保守序列,推断基因进化关系和物种亲缘关系;预测蛋白质功能结构域,辅助蛋白质结构预测;构建基因调控网络,揭示信号转导网络中蛋白质相互作用模式等。




Motif预测分析常用软件


目前,motif主流的分析软件是MEME和HOMER(http://homer.ucsd.edu/homer/)。MEME主要基于多重期望最大化(EM)算法,通过迭代计算来寻找序列中最可能的motif模式。HOMER则是通过对基因组数据进行统计分析,结合已知的转录因子结合位点信息等,识别motif。

从结果展示方面,这两个软件也是有些区别的。

  • 3.1 MEME分析motif

MEME网址:https://meme-suite.org/meme/

»  3.1.1 网页版分析步骤如下:

① 进入官网,点击MEME模块

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② 分析模式选择(绿色框):motif discovery mode一般选择经典模式,提供一组序列。后面两种模式需要提供两组序列,旨在相对于第二组(对照)在第一组(主要)中富集的基序。the sequence alphabet指如果你的序列不是标准字母表(DNA、RNA、或蛋白质),必须输入自定义字母表,一般不用管。

③ 提交序列(红框):选择“Upload sequences”上传包含序列的FASTA文件,上传完文件后,MEME网站会自动检测是蛋白序列还是DNA序列;或选择“Type in sequences”直接将序列粘贴到文本框中。

④ 设置参数(黄色框):Site Distribution根据对序列中motif分布的预期选择,如“zero or one per sequence”表示每个序列中motif出现0次或1次,为默认选项;“one per sequence”表示每个序列中恰好出现1次;“any number of repetitions”表示每个序列中可出现任意次。

⑤ Motif数量(蓝色框):设置期望MEME发现的motif数量,决定在这一组多条序列中,将被挖掘出的结构域的种类数量。可先设置一个较大的值,再根据初步结果调整。默认值是3。

注:一般可先使用默认参数,如有特殊需求,再对其他参数进行调整。还可选择提供邮箱地址,以便接收结果通知。

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⑥ 提交分析:点击“Start Search”按钮提交任务,开始motif分析。

»  3.1.2 结果解读

① 查看基本信息:MEME的结果页面提供多种格式的输出,如HTML、PDF等。首先查看motif的基本信息,包括motif的序列模式、E-value等,E-value越小,表明motif越具有统计学意义。

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② 分析motif分布:查看motif在输入序列中的分布情况,了解motif在不同序列中的位置和出现频率,判断其分布是否具有生物学意义。

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③ 与已知motif比较:可将发现的motif与已知的motif数据库(如TRANSFAC、JASPAR)进行比较,通过Tomtom工具等,确定是否与已知的motif相似,以推测其可能的生物学功能。

注:如果我们想要包含坐标轴和E-value,选择MEME软件分析更合适哦,motif序列也可以通过Adobe Illustrator等图片编辑软件拼接到peak峰图对应位置。

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  • 3.2 HOMER分析motif

»  3.2.1 分析步骤如下:

① 下载脚本安装HOMER、配置环境变量并下载基因组数据数据准备

② 准备目标序列文件:如果是基于ChIP-seq、ATAC-seq等高通量测序数据进行分析,需先进行peak calling,得到包含基因组位置信息的峰文件,如BED格式文件。文件中至少包含染色体、起始位置、结束位置等信息。

③ 确定背景序列:可选择默认的自动背景选择,也可自定义背景序列。若自定义,需准备包含背景序列基因组位置信息的文件。

④ 参数设置(参考):

-len:设置要查找的motif长度,可指定多个长度,如-len 8,10,12表示查找长度为8bp、10bp和12bp的motif。

-size:指定分析区域的大小。-size 200表示每个峰的中心点前后各100bp,总共200bp的区域将被考虑进行分析;若要使用peak的实际大小进行分析,使用-size given。

-p:指定使用的CPU数量。

-mset:可指定使用的数据库,如-mset vertebrates表示使用脊椎动物数据库。

»  3.2.2 结果解读

① 查看HTML结果文件:在输出目录中,homerresults.html文件展示新基序发现的结果,knownresults.html展示已知基序的发现结果。

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注:Known和homer是两种不同的motif预测算法,结果都是可信的。Known motif基于已有转录因子数据库的motif结果,比对本次的peak有没有在这些已有的研究motif上富集;homer result是指利用所有的peak从头(de novo)计算得到motif,然后会比对已有转录因子数据库的motif,看比对率最一致的是哪个(bestmatch)。两者不一定一致(因为motif序列是一组序列模式,相似的序列可能会被归为同一个motif)。

② 分析结果指标:

p-value:基于统计学的p值,用于表示基序在目标序列中出现的显著性。

q-value(benjamini):p值经过benjamini-hochberg校正后的q值,用于多重假设检验控制假阳性率。

fold enrichment:富集倍数,表示基序在目标序列中出现的频率相对于背景序列的频率。

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③ 查看motif序列和logo图:结果中会提供motif 的具体序列信息,还可能有logo图展示motif的序列特征,可直观了解motif中各碱基的分布和保守性。

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爱基默认的motif分析软件是HOMER,其利用了已知的数据库信息和高通量数据的背景,在motif富集分析上的准确性相对较高。富集类的项目,如ChIP-seq、ATAC-seq、DAP-seq、RIP-seq、meRIP-seq、meDIP-seq爱基的标准流程中均会提供motif预测分析。如您需要相关技术,欢迎各位老师咨询哟~

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