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快速get国自然热点—单细胞免疫组库的研究思路免疫系统作为人体抵御病原体入侵及维持内环境稳态的核心防御体系,由免疫器官、免疫细胞(如T细胞、B细胞、巨噬细胞等)与免疫活性物质(抗体、细胞因子等)协同构成。在免疫应答过程中,各免疫细胞精准分工,通过复杂信号通路交互协作,以识别并清除病原体或病变细胞。T细胞和B细胞是特异性免疫反应中的关键细胞,T细胞负责细胞免疫和调节免疫反应,而B细胞主要通过产生抗体来介导体液免疫。 T细胞和B细胞是特异性免疫反应中的关键细胞,T细胞负责细胞免疫和调节免疫反应,而B细胞主要通过产生抗体来介导体液免疫。这两个细胞识别抗原依赖于细胞表面的特定受体“T细胞受体(TCR)”和“B细胞受体(BCR)”,这两种受体在结构上有所不同。
![]() 图1. TCR/BCR结构(图来自10X)
![]() 图2. TCR/BCR结构域 传统的免疫组库研究技术主要依赖多重PCR或RACE扩增TCR/BCR的CDR3区域,再结合高通量测序进行分析。然而,这种方法通常只能获取单条链(α/β或γ/δ,轻/重链)的信息,无法进行受体的双链配对研究,从而难以确定在抗原刺激下具体哪些免疫细胞及其受体在执行功能。因此,提升免疫组库研究的分辨率对于深入理解机体免疫机制至关重要。 这一瓶颈在2015年随着10x Genomics Chromium单细胞平台的推出取得了突破。该平台基于微流控油滴包裹技术,可同时进行高通量的单细胞转录组测序和单细胞V(D)J测序。其核心优势在于:不仅能精准匹配TCR/BCR的双链(例如,TCRα与TCRβ链,BCR重链与轻链),获取完整的双链组成信息,更能细化到单细胞层面,将这些免疫受体序列与该细胞的5'端转录组表达信息直接关联。 ![]() scVDJ-seq利用微流控、油滴包裹和barcode标记等技术来实现高通量的细胞捕获技术,能够一次性分离、并标记500–10000个单细胞,在单细胞水平同时检测转录组基因表达和TCR/BCR多样性,不但可以了解TCR/BCR克隆型,还可以联合转录组数据深入挖掘生命机理,为免疫组学研究提供更高效的平台。 B细胞或者T细胞里,V(D)J 区段是在mRNA 的5'端,所以和Gel Bead表面携带的Barcode和UMI所在的核酸序列紧挨着的是mRNA的5‘端,以便捕获全长的V(D)J序列。 在每一个单独的GEM里,除了Gel Bead表面携带的Barcode和UMI所在的核酸序列,还有游离的poly-dT作为引物来结合RNA 3'端 poly(A)尾巴来扩增得到全长cDNA,这一步是发生在每个GEM内部。 GEM裂解后,所有细胞cDNA混在一起进行扩增以达到建库要求,扩增后的产物分成2份同时进行TCR/BCR的V(D)J文库构建和5’单细胞转录组文库构建,获得每个细胞表达谱和V(D)J全长序列。来自同一细胞的VDJ文库序列和转录组文库序列有相同的细胞标签(Barcode),这样每个细胞转录组数据可以对应该细胞的V(D)J信息。 ![]() 10x VDJ-seq实验流程图
从实验组和对照组中分离B/T细胞,进行scRNA-seq和scVDJ-seq,利用生物信息学工具进行分析,以识别B/T细胞亚群和它们的转录特征。随后基于基因表达模式,使用聚类算法将B/T细胞分为不同的亚群,比较实验组和对照组之间的基因表达差异。接下来,通过BCR/TCR使用特征分析、克隆型分析对B/T细胞异质性进行研究。 ![]()
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