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CUT&Tag+RNA-seq关联分析的 5 个套路
☝点击上图，查看限时大促详情！ CUT&Tag是研究蛋白和DNA互作的新兴实验方法，该方法是通过蛋白特异性抗体引导Protein A-Tn5酶在目标蛋白结合的DNA位置进行切割并且在序列两端加上测序接头，经过PCR扩增后形成可以用于高通量测序的文库，随后对文库进行测序分析从而解析与目标蛋白结合的DNA片段。 利用CUT&Tag，我们可以得到目标转录因子/辅因子/组蛋白结合位点信息，确定靶基因信息；对相关基因组功能元件（诸如启动子、增强子）进行注释分析；所需样本起始量低，适合珍惜样本（如胚胎细胞、数量有限的原代细胞、流式分选后的细胞等）。 单一组学分析可能无法完全揭示生物系统的复杂性，多种组学数据的整合可以通过构建生物分子网络和路径，揭示生物系统的整体性和系统性特征。CUT&Tag作为 2019年报道的蛋白和DNA互作的实验方法，发表过的研究已广泛应用多组学，其中最为普遍是“CUT&Tag+RNA-seq”组合。 CUT&Tag和RNA-seq关联分析也比较套路，一般有以下几种。 1. CUT&Tag关联基因和RNA-seq的差异表达基因进行overlap。 ChIP-seq数据差异分析拿到关联基因的基因集，与RNA-seq数据的差异表达基因的数据集取交集，这个结果通常用于筛选关键目的基因。一般是通过venn图进行可视化展示。网上有很多在线工具可以绘制venn图，当然爱基百客的云平台也提供venn图绘制的小工具。
图：CUT&Tag和RNA-seq数据关联分析匹配基因[1]
爱基百客云平台小工具 2. 对overlap过的基因进行功能分析。 功能分析可以分为通用的GO/KEGG分析，也可以根据已有的文献报道进行挖掘。
overlap后的匹配的差异基因的GO分析[1] 3. 基因组浏览器可视化 确定目标基因后，可以对相关基因的mRNA水平和Peak进行联合可视化展示，结果类似下图。这一类结果通常是利用基因组浏览器（如IGV、UCSC Genome Brower等）展示特定区域的CUT&Tag和RNA-seq数据，直观观察转录因子结合位点、组蛋白修饰的分布和水平以及相应基因的表达水平。
图：在MET基因座位上，叠加显示了CUT&Tag、ChIP-seq和RNA-seq的轨迹，展示了SET、CDK9、PP2A-A、PP2A-C和Pol II在染色质上的占据情况，以及在对照组和SET-KO细胞中的mRNA表达情况[2] 4. 基因调控网络图 利用软件工具如Cytoscape等，根据CUT&Tag和RNA-seq数据构建的基因表达调控网络，直观地展示转录因子、组蛋白修饰与目标基因之间的互相作用。
图：预测的转录因子及其与超级增强子SE相关的差异表达基因的相互作用。[3] 5. 相关性分析 将基因表达水平的差异倍数和相关peak信号强度差异进行相关性分析。以下图为例，结果展示了基因表达变化与H3K36me3信号之间的相关性，挖掘其中调控的关系。
图：基因表达变化与H3K36me3信号之间的相关性[4] 爱基百客专注于表观组学10年，提供领先的表观组学服务。在CUT&Tag上拥有丰富的经验，提供从方案设计、样本处理、建库测序、数据分析和验证一站式服务；另外，有云平台，多组学联合分析助力深度挖掘数据。目前，CUT&Tag正在做春季大促，有相关需求的老师欢迎咨询驻地销售或联系助理小爱。
项目咨询（市场部助理小爱）
参考文献 1. Di X, Xiang L and Jian Z (2023), YAPmediated mechanotransduction in urinary bladder remodeling: Based on RNA-seq and CUT&Tag.Front. Genet. 14:1106927. 2. Xu H, Wu D, Xiao MM, et al(2024), PP2A complex disruptor SET prompts widespread 3. hypertranscription of growth-essential genes in the pancreatic cancer cellsSci. Adv. 10, eadk6633. 4. Zeng J, Chen J, Li M, Zhong C, Liu Z,Wang Y, Li Y, Jiang F, Fang S and Zhong W (2023), Integrated high-throughput analysis identifies super enhancers in metastatic castration-resistant prostate cancer.Front. Pharmacol. 14:1191129. 5. Zhang, Y., Fang, Y., Tang, Y. et al (2022), SMYD5 catalyzes histone H3 lysine 36 trimethylation at promoters. Nat Commun 13, 3190 了 解 更 多 { 往 期 精 彩 回 顾 } 精选合集，欢迎收藏哟！
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